THE PECULIARITIES OF OPERATION OF GLUTATHIONE COMPONENT OF ANTIOXIDANT PROTECTION AND LIPID METABOLISM IN PREGNANT RAT FEMALES UNDER THE ACTION OF CHROMIUM CITRATE
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/sbi.0701.276
Abstract
The effect of chromium citrate in dose of 10 µg Cr (ІІІ)/ kg body weight on functioning of the glutathione antioxidant system level and lipid metabolism in pregnant female rats has been studied. Growth of the reduced glutathione content in blood, liver, spleen, and myocardium of female rats of the experimental group against the backdrop of increasing glutathione reductase activity in these tissues has been established. At the same time, growth of glutathione peroxidase activity in the myocardium of females rats, and a decrease in lungs and foetus was found. An increase in glucose-6-phosphate dehydrogenase activity in the myocardium, and the decline in kidney and spleen have been shown. Lowering in triacylglycerols in blood of female rats of the experimental group compared to the control was detected. Thus, administration of chromium citrate in quantity of 10 mg Cr (ІІІ) /kg body weight, enhances glutathione link of antioxidant system and normalizes lipid metabolism in pregnant female rats.
Keywords
Full Text:
PDF (Українська)References
1. Афанасьєва Н.В., Стрижаков А.Н. Результати вагітності та пологів при фетоплацентарній недостатності різного ступеня тяжкості. Питання гінекології, акушерства та перинатології, 2007; 3(2): 7–13.
2. Бурмістров С.О., Опаріна Т.І., Прокопенко В.М., Арутюнян А.В. Показники процесу деградації білків і антиокислювальної системи при нормальній вагітності. Акушерство і гінекологія, 2001; 6: 12–19.
3. Влізло В.В., Федорук Р.С., Макар І.А. Фізіолого-біохімічні методи досліджень у біології, тваринництві та ветеринарній медицині: довідник. Львів: ВМС, 2004. 399 с.
4. Іскра Р.Я., Янович В.Г. Інтенсивність пероксидних процесів і активність антиоксидантних ферментів у тканинах щурів за підвищеного рівня хрому в раціоні. Укр. біохім.журнал, 2011; 83(3): 98–105.
5. Іскра Р. Я. Функціональний стан антиоксидантної системи і вуглеводний обмін у крові щурів за дії неорганічної та органічної сполук хрому. Вісник Львів. ун-ту. Сер. біол, 2011; 57: 47–52.
6. Керимов Б.Ф. Глутатиондефицитное состояние нервной ткани голодавших животных интенсифицирует пероксидное окисление липидов и окисление белковых SH-групп. Укр. біохім. журнал, 2004; 76(1): 108–113.
7. Коваль Т.В., Коваль В.Т., Назарова О.О., Матишевська О.П. Зміна вмісту глутатіону в тимоцитах щурів за індукції апоптозу під впливом Н2О2 або радіації. Укр. біохім. журнал, 200; 80(2): 114–119.
8. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Обмен глутатиона. Успехи биол. химии,1990; 31: 157–179.
9. Поліщук І.П. Стан деяких показників ліпідного обміну, перекисного окислення ліпідів та системи антиоксидантного захисту у вагітних з прееклампсією. Галицький лікарський вісник, 2005; 12(3): 74–76.
10. Anderson R.A., Roussel A-M., Zouari N., Mahjoub S. Potential antioxidant effects of zinc and chromium supplementation in people with type 2 diabetes mellitus. Journ. of the American College of Nutrition, 2001; 20(3): 212-218. | |
| |
11. Campbell W.W., Beard J.L., Joseph L.J. Chromium picolinate supplementation and resistive training by older men: effects on iron-status and hematologic indexes. Am. J. Clin. Nutr, 1997; 66 (4): 944-949. | |
| |
12. Cefalu W.T., Hu F.B. Role of Chromium in Human Health and in Diabetes. Diabetes Care, 2004; 27(11): 2741-2751. | |
| |
13. Cheng H.H., Lai M.H., Hou W.C., Huang C.L. Antioxidant effects of chromium supplementation with type 2 diabetes mellitus and euglycemic subjects. J. Agric. Food Chem, 2004; 52: 1385-1389. | |
| |
14. Flynn T.J., Sapienza P.P., Wiesenfeld P.W. et al. Effects of oral androstenedione on steroid metabolism in liver of pregnant and non-pregnant female rats. Food and Chemical Toxicology, 2005; 43: 537-542. | |
| |
15. Gromek A., Pastuzko A. The localization of mitochondrial NADP-dependent isocitrate dehydrogenase in normal and hypoxic conditions. J. Neurochem, 1977; 28: 429-433. | |
| |
16. Jain S.K. Kannan K. Chromium chloride inhibits oxidative stress and TNF-a secretion caused by exposure to high glucose in cultured U937 мonocytes. Biochem. and Biophys. Research Communications, 2001; 289: 687-691. | |
| |
17. Jain S.K., Rains J.L., Croad J.L. High glucose and ketosis (acetoacetate) increases, and chromium niacinate decreases, IL- 6, IL-8, and MCP-1 secretion and oxidative stress in U937 моноцитов. Antioxid Redox Signal, 2007; 9: 1581-1590. | |
| |
18. Martin J., Wang Z.Q., Zhang X.H. et al. Chromium picolinate supplementation attenuates body weight gain and increases insulin sensitivity in subjects with type 2 diabetes. Diabetes Care, 2006; 29: 1826-1832. | |
| |
19. Pechova A., Pavlata L. Chromium as an essential nutrient: a review. Veterinarni Меdicina, 2007; 52(1): 1-18. | |
| |
20. Peter J. Espenshade SREBPs: sterolregulated transcription factors. Journ. of Cell Science, 2006; 119: 973-976. | |
| |
21. Sutter-Dub M.Th., Sfaxi A., Strozza P. Glucose metabolism in the female rat adipocyte: lipid synthesis from glucose during pregnancy and progesterone treatment. J. Endocrinol, 1983; 97: 207-212. | |
| |
22. Vincent J.B. The Nutritional Biochemistry of Chromium(III). Department of Chemistry The University of Alabama Tuscaloosa, USA, 2007. 277 p. | |
| |
23. Volpe S.L., Huang H.W., Larpadisorn K., Lesser I.I. Effect of chromium supplementation and exercise on body composition, resting metabolic rate and selected biochemical parameters in moderately obese women following an exercise program. J. Am. Coll. Nutr, 2001; 20(4): 293-306. | |
Refbacks
- There are currently no refbacks.
Copyright (c) 2013 Studia biologica
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.