СТАН ПРОДИХОВОГО АПАРАТУ ЛИСТКІВ РОСЛИН FAGOPYRUM ESCULENTUM MOENCH. ТА VICIA FABA L. ЗА ВПЛИВУ NaCl ЗАСОЛЕННЯ
Анотація
Досліджено вплив 100 мМ та 250 мМ NaCl на стан продихового апарату і відносний вміст води у рослин гречки посівної (Fagopyrum esculentum Moench.) та бобів кінських (Vicia faba L.) на 48-му, 72-гу год та на 7-му добу впливу солі. Встановлено, що сольовий стрес негативно впливає на розміри й апертуру продихів, а також призводить до зниження відносного вмісту води у дослідних рослинах. Водночас показано швидшу реакцію рослин V. faba на засолення, в яких спостерігалася більша різниця між контролем і дослідом, аніж у F. esculentum. Відносний вміст води у гречці залишався стабільно нижчим порівняно з контролем на усіх точках експозиції з NaCl, тоді як у бобів кінських він поступово зростав, та зрівнявся з контролем на 7-му добу впливу солі. Ймовірно, така реакція рослин на сольовий стрес пов’язана зі збереженням водного балансу в них. Збільшення відносного вмісту води у бобів може бути пов’язане із закриттям продихів, що найкраще спостерігалося на 7-му добу впливу солі, та може забезпечувати зменшення втрати води у процесі транспірації в умовах засолення середовища.
Повний текст:
PDFПосилання
Averyna N. H., Shcherbakov R. A., Beizay Z. Rol metabolyzma azota v formyrovanyy soleustoichyvosty rastenyi yachmenia (Hordeum vulgare L.) y pshenytsy (Triticum aestivum) // Molekuliarnye, membrannye y kletochnye osnovy funktsyonyrovanyia byosystem: mezhdunar. nauch. konf. Mynsk, 2012. S. 20–23.
Vazhov V. M. Hrechykha na poliakh Altaia. M.: Yzd. Dom Akademyy estestvoznanyia, 2013. 188 s.
Voloshyna N. Yu., Biliavska N. O. Mikrostruktura poverkhni lystkiv dvokh lisovykh vydiv klena v zalezhnosti vid osvitlennia v kroni // Visn. Kharkiv. nats. ahrar. un-tu. Ser. biol. 2013. Vyp. 1. № 28. S. 6–17.
Hryhorenko I. V. Vyvchennia prodykhovoho aparatu lystia predstavnykiv rodyny mahnoliievykh v umovakh pivdennoho skhodu Ukrainy u zviazku z posukhostiikistiu // Visn. Zaporizk. un-tu. Ser. biol. 1999. № 1. S. 1–4.
Derkach I. V., Romaniuk N. D. Vplyv NaCl zasolennia na rist ta pihmentnu systemu Fagopyrum esculentum Moench. ta Vicia faba L. // Visn. Kharkiv. un-tu. 2015. Vyp. 25. S. 308–319.
Zhuk O. I. Formuvannia adaptyvnoi vidpovidi roslyn na defitsyt vody // Fyzyolohyia y byokhymyia kult. rastenyi. 2011. T. 43. № 1. S. 26–37.
Isaienkov S. V. Fiziolohichni ta molekuliarni aspekty solovoho stresu roslyn // Tsytolohyia y henetyka. 2012. № 5. S. 50–71.
Korovetska H. V. Adaptatsiia roslyn Faba bona Medic. (Vicia faba L.) ta Carex hirta L. do defitsytu volohy v umovakh naftovoho zabrudnennia gruntu: avtoref. dys. … kand. biol. nauk: 03.00.12. K., 2010. 20 s.
Korovetska H., Sokhanchak R., Dzhura N. ta in. Stan prodykhovoho aparatu lystkiv roslyn Carex hirta L. za vplyvu naftovoho zabrudnennia gruntu // Visn. Lviv. un-tu. Ser. biol. 2008. Vyp. 47. S. 166–171.
Lakyn H. F. Byometryia. M.: Vyssh. shkola, 1990. 351 s.
Romaniuk N. D., Tsvilyniuk O. M., Mykiievych I. M., Terek O. I. Fiziolohiia roslyn: navch. praktykum dlia stud. biol. f-tu. Lviv: Piramida, 2005. 160 s.
Romenskyi V. Yu. Vplyv zroshennia i mineralnoho udobrennia na riven rodiuchosti gruntu pry vyroshchuvani polovykh kultur v umovakh pivdennoho Stepu Ukrainy // Biul. In-tu silsk. hosp-va stepovoi zony. 2011. № 1. S. 140–144.
Solovykh N. V. Dyahnostyka soleustoichyvosty rastenyi roda Rubus byotekhnolohycheskym metodom // Vestn. MychHAU. 2010. № 1. S. 68–72.
Abbruzzese G., Beritognolo I., Muleo R. Leaf morphological plasticity and stomatal conductance in three Populus alba L. genotypes subjected to salt stress // Environ. Exp. Bot. 2009. Vol. 66. P. 381–388. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2009.04.008
Arya N., Singh V. P. Protection of buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench.) from different salinity stress by Triazoles // Proceedings of the VII International Symposium on Buckwheat. Advances in Buckwheat Research. Winnipeg, 1998. P. 68–75.
Ashraf M., Harris J. C. Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants // Plant Sci. 2004. Vol. 166. P. 3–16. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2003.10.024
Azooz M. M. The potential role of seed priming with ascorbic acid and nicotinamide and their interactions to enhance salt tolerance in broad bean (Vicia faba L.) // AJCS. 2013. N 7. P. 2091–2100.
Barbieri G., Vallone S., Orsini F. Stomatal density and metabolic determinants mediate salt stress adaptation and water use efficiency in basil (Ocimum basilicum L.) // J. Plant Physiol. 2012. Vol. 169. P. 1737–1746. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2012.07.001
Barr H. D., Weatherley P. E. A re-examination of the relative turgidity technique for estimating water deficit in leaves // Aust. J. Biol. Sci. 1962. Vol. 15. N 3. R. 413–428.
Chaves M. M., Flexas J., Pinheiro C. Photosynthesis under drought and salt stress: regulation mechanisms from whole plant to cell // Ann. Bot. 2009. Vol. 103. P. 551–560. https://doi.org/10.1093/aob/mcn125
El-Bassiouny H. M. S., Bekheta M. A. Effect of salt stress on relative water content, lipid peroxidation, polyamines, amino acids and ethylene of two wheat cultivars // Int. J. Agric. Biol. 2005. Vol. 7. N 3. R. 363–368.
Fariduddin Q., Mir B. A., Ahmad A. Physiological and biochemical traits as tools to screen sensitive and resistant varieties of tomatoes exposed to salt stress // Braz. J. Plant Physiol. 2012. Vol. 24. N 4. P.281–292. https://doi.org/10.1590/S1677-04202012000400007
González L., González-Vilar M. Determination of relative water content // Handb. Plant Ecophysiol. Techniques. 2001. Ch.14. P. 207–212.
Gupta B., Huang B. Mechanism of salinity tolerance in plants: physiological, biochemical, and molecular characterization // Int. J. Genomics. 2014. Vol. 2014. P. 1–18. https://doi.org/10.1155/2014/701596
Kadam P., Pravin C. Effect of NaCl salinity on stomatal density and stomatal behaviour of Crotalaria L. species // Bionano Frontier. 2010. Vol. 3. N 2. P. 300–303.
Mullan D., Pietragalla J. Leaf relative water content // Physiological Breeding II: A Field Guide to Wheat Phenotyping. 2012. Ch. 5. P. 25–27.
Munns R., Gilliham M. Salinity tolerance of crops – what is the cost? // New Phytol. 2015. Vol. 208. P. 668–673. https://doi.org/10.1111/nph.13519
Neto A. D. A., Prisco J. T., Enéas-Filho J. et al. Effects of salt stress on plant growth, stomatal response and solute accumulation of different maize genotypes // Braz. J. Plant Physiol. 2004. Vol. 16. N 1. P. 31–38. https://doi.org/10.1590/S1677-04202004000100005
Qados A. M. S. Effect of salt stress on plant growth and metabolism of bean plant Vicia faba (L.) // J. Saudi Soc. Agric. Sci. 2011. N 10. P. 7–15.
Rajput V. D., Chen Y., Ayup M. Effects of high salinity on physiological and anatomical indices in the early stages of Populu seuphratica Growth // Russ. J. Plant Physiol. 2015. Vol. 62. N 2. P. 229–236. https://doi.org/10.1134/S1021443715020168
Robinson M. F., Very A. A., Sanders D., Mansfield T. A. How can stomata contribute to salt tolerance? // Ann. Bot. 1997. Vol. 80. P. 378–393. https://doi.org/10.1006/anbo.1996.0435
Seemann J. R., Critchley C. Effects of salt stress on the growth, ion content, stomatal behavior and photosynthetic capacity of a salt-sensitive species, Phaseolus vulgaris L. // Planta. 1985. Vol. 164. P. 151–162. https://doi.org/10.1007/BF00396077
Van Hoorn J. W., Van Alphen J. G. Salinity control // Drainage Principles and Applications. Wageningen, 2006. P. 533–600.
Zheng Y. H., Li X., Li Y. G. et al. Contrasting responses of salinity-stressed salt-tolerant and intolerant winter wheat (Triticum aestivum L.) cultivars to ozone pollution // Plant Physiol. Biochem. 2012. Vol. 52. P. 169–178. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2012.01.007
Zollinger N., Koenig R., Cerny-Koenig T., Kjelgren R. Relative salinity tolerance of intermountain Western United States native herbaceous perennials // Hort Sci. 2007. Vol. 42. N 3. P. 529–534.
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2017.75.20
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.
