ВПЛИВ КАЛІЙ БІХРОМАТУ НА ДЕЯКІ ФІЗІОЛОГІЧНІ ОСОБЛИВОСТІ БАКТЕРІЙ ЦИКЛУ СУЛЬФУРУ ОЗЕРА ЯВОРІВСЬКЕ
Анотація
Встановлено, що за впливу 2−3 мМ K2Cr2O7 у інкубаційній суміші сповільнюється нагромадження біомаси й окиснення гідроген сульфіду Thiocapsa sp. Ya-2003, Lamprocystis sp. Ya-2003 і Chlorobium limicola ІМВ К-8 у середовищі ван Ніля з 4−10 мМ Na2S×9H2O. У клітинах C. limicola ІМВ К-8, інкубованих з 3 мМ K2Cr2O7, до 20 % знижується вміст глюкози та глікогену. K2Cr2O7 за концентрації 3,5 мМ у інкубаційній суміші майже удвічі пригнічує ріст і сульфідогенну активність Desulfuromonas аcetoxidans ІМВ В-7384, Desulfuromonas sp. Yavor-5, Desulfuromonas sp. Yavor-7, Desulfovibrio desulfuricans ІМВ К-6, Desulfovibrio sp. Yav-6, Desulfovibrio sp. Yav-8. Досліджені бактерії з різною інтенсивністю використовують Cr ( VI) як єдиний акцептор електронів у процесі анаеробного дихання за концентрацій 1,74–10,41 мМ K2Cr2O7 у середовищі Кравцова-Сорокіна. Найвищу біомасу бактерії Desulfuromonas sp. Yavor-7 і Desulfovibrio sp. Yav-8 нагромаджували в середовищі з 1,74 мМ K2Cr2O7 (до 1,52 і 1,55 г/л, відповідно), яка виявилася в півтора разу нижчою, ніж у середовищі з фумаратом за цієї ж концентрації. Завдяки стійкості до K2Cr2O7 бактерії родів Thiocapsa, Lamprocystis, Chlorobium, Desulfuromonas і Desulfovibrio, виділені з озера Яворівське, можуть бути використані у технологіях, спрямованих на детоксикацію середовищ від гідроген сульфіду і сполук шестивалентного хрому.
Повний текст:
PDFПосилання
Honchar M. V. Chutlyvyi metod kilkisnoho vyznachennia peroksydu vodniu ta substrativ oksydaz u biolohichnykh obiektakh // Ukr. biokhim. zhurnal. 1998. T. 70. № 5. S. 157–163.
Horishnyi M., Hudz S., Hnatush S. Metabolizm hliukozy ta hlikohenu u klitynakh zelenykh fotosyntezuvalnykh sirkovykh bakterii Chlorobium limicola Ya-2002 // Visn. Lviv. un-tu. Ser. biol. 2008. Vyp. 46. S. 129–136.
Hudz S. P., Hnatush S. O., Yavorska H. V., Bilinska I. S., Borsukevych B. M. Praktykum z mikrobiolohii: pidruchnyk. Lviv: LNU imeni Ivana Franka, 2014. 436 s.
Derkach M. P., Humetskyi R. Ya., Chaban M. Ye. Kurs variatsiinoi statystyky. K.: Vyshcha shkola, 1977. 208 s.
Kit L. Ya., Hudz S. P. Purpurovi sirkobakterii z vodoim Yavorivskoho rodovyshcha sirky // Mikrobiol. zhurnal. 2007. T. 69. № 1. S. 12–19.
Moroz O. M. Zakonomirnosti utvorennia sirkovodniu sulfatvidnovliuvalnymy bakteriiamy vodoimy karieru Yavorivskoho sirkovoho rodovyshcha // Nauk. visn. Uzhhorod. un-tu. Ser. biol. 2010. Vyp. 27. S. 56–63.
Moroz O. M., Peretiatko T. B., Klym I. R. ta in. Sirkovidnovliuvalni bakterii ozera Yavorivske: deiaki morfolohichni, kulturalni i fiziolohichni osoblyvosti // Nauk. visn. Uzhhorod. un-tu. Ser. biol. 2013. Vyp. 35. S. 34−41.
Peretiatko T., Hudz S. Vidnovlennia spoluk shestyvalentnoho khromu sulfatvidnovliuvalnymy bakteriiamy // Biolohichni studii / Studia biologica. 2010. T. 4. № 2. S. 53–62.
Sovremennaia mykrobyolohyia. Prokaryoty / red. Y. Lenheler, H. Drevs, H. Shlehel; per. s anhl. M.: Myr, 2005. T. 1. 654 s.
Svidotstvo pro deponuvannia asotsiatsii sulfatvidnovliuvalnykh bakterii Ya-11 (Desulfovibrio desulfuricans Ya-11 i Pseudomonas sp.) / T.B. Peretiatko, A.A. Halushka, S.P. Hudz, S.O. Hnatush. Reiestr. nom. IMV K-6 vid 21.01.09.
Svidotstvo pro deponuvannia konsortsii bakterii Chlorobium limicola Ya-2002 i Pseudomonas sp / M.B. Horishnyi, S.O. Hnatush, O.M. Moroz, O.V. Levytska, S.P. Hudz. Reiestr. nom. IMV K-8 vid 02.11.10.
Svidotstvo pro deponuvannia shtamu bakterii Desulfuromonas acetoxidans Ya-2006 / S.P. Hudz, S.O. Hnatush, O.M. Moroz, T.B. Peretiatko, O.M. Vasyliv. Reiestr. nom. IMV V-7384 vid 10.04.13.
Aguilar-Barajas E., Diaz-Perez C., Ramirez-Diaz M. I. et al. Bacterial transport of sulfate, molybdate, and related oxyanions // Biometals. 2011. Vol. 24. P. 687–707. https://doi.org/10.1007/s10534-011-9421-x
Belchik S. M., Kennedy D. W., Dohnalkova A. C. et al. Extracellular reduction of hexavalent chromium by cytochromes MtrC and OmcA of Shewanella oneidensis MR-1 // Appl. Environ. Microbiol. 2011. Vol. 77. P. 4035–4041. https://doi.org/10.1128/AEM.02463-10
Bilyy O. I., Vasyliv O. M., Hnatush S. O. The anode biocatalyst with simultaneous transition metals pollution control. Technology and Application of Microbial Fuel Cells. Rijeka, Croatia: InTech, 2014. 96 p.
Caballero-Flores G. G., Costa-Navarrete Y. M., Ramirez-Diaz M. I. et al. Chromate-resistance genes in plasmids from antibiotic-resistant nosocomial enterobacterial isolates // FEMS Microbiol. Lett. 2012. Vol. 327. P. 148–154. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2011.02473.x
Caumet P. Ecology and general physiology of anoxygenic phototrophic bacteria in benthic environments. In: Microbial mats: physiological ecology of benthic microbial communities / X. Coren and E. Rosenberg Eds. Washington: American Soc. for Microbiology, 2003. P. 383–404.
Fonseca B. M., Paquete C. M., Neto S. E. et al. Mind the gap: cytochrome interactions reveal electron pathways across the periplasm of Shewanella oneidensis MR-1 // Biochem. J. 2013. Vol. 449. N 1. P. 101–108. https://doi.org/10.1042/BJ20121467
Gescher J., Kappler A. Microbial metal respiration: from geochemistry to potential applications. Berlin Heidelberg: Springer-Verlag, 2012. Vol. 8. 236 p. https://doi.org/10.1007/978-3-642-32867-1
Harris D. S. Quantitative Chemical Analysis. 6-th ed. 2003. 928 p.
Richter K., Schicklberger M., Gescher J. Dissimilatory reduction of extracellular electron acceptors in anaerobic respiration // Appl. Environ. Microbiol. 2012. Vol. 78. N 4. P. 913–921. https://doi.org/10.1128/AEM.06803-11
Sobol Z., Schiestl R. H. Intracellular and extracellular factors influencing Cr (VI) and Cr (III) genotoxicity // Environ. Mol. Mutagen. 2012. Vol. 53. P. 94–100. https://doi.org/10.1002/em.20679
Viti C., Marchi E., Decorosi F., Giovannetti L. Molecular mechanisms of Cr (VI) resistance in bacteria and fungi // FEMS Microbiol. Rev. 2014. Vol. 38. N 4. P. 633–659. https://doi.org/10.1111/1574-6976.12051
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2017.75.14
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.
