Na+, K+-ATPase ACTIVITY of LOACH EMBRYOS MEMBRANES DURING EARLY EMBRYOGENESIS UNDER THE INFLUENCE OF SODIUM HYPOCHLORITE

A. R. Zyn, N. P. Holovchak, S. M. Mandzynets, M. V. Bura, D. I. Sanagursky


DOI: http://dx.doi.org/10.30970/sbi.0503.163

Abstract


The paper contains data regarding the influence of sodium hypochlorite on the activity of embryos membrane Na+, K+-ATP-ase of loach Misgurnus fossilis L. in early stages of the development. We showed that sodium hypochlorite added to the medium where the embryos develop, caused dose-dependent inhibition of the membranes Na+, K+-ATP-ase activity. We suggested that effects of sodium hypochlorite were due to oxidizing properties and its ability to disrupt membrane integrity, in particular, damaging proteins and lipids.


Keywords


membrane transport, plasma membrane, loach embryos, Na+, K+-activated Mg2+-dependent ATP-ase, sodium hypochlorite

References


1. Бойко Н.М., Целевич М.В., Санагурський Д.І. Активність Na+, K+-ATФ-ази мембран зародків в'юна (Misgurnus fossilis L.) за дії катіонів важких металів. Укр. біохім. журнал, 2004; 76(2): 22.

2. Болдырев А.А. Na+, K+-ATФаза - свойства и биологическая роль. Соросовский образоват. журнал, 1998; 4: 2-9.

3. Болдырев А.А., Курелка Е.Г., Тюлина О.В. Окислительная устойчивость Na+, K+-ATФазы. Доклады Академии Наук РФ, 1995; 342(4): 546-548.

4. Брезвин О.М. Токсикодинаміка Т-2 токсину під дією розчину гіпохлориту натрію: автореф. дис. ... канд. вет. наук: спец. 16.00.04 / Брезвин О. М.; Львів. нац. академія вет. медицини ім. С.З. Гжицького. - Львів, 2005. 19 с.

5. Гойда О.А. Биофизические аспекты раннего онтогенеза животных. К.: Наук. думка, 1993. 224 с.

6. Гойда Е.А., Медына И.Р., Чабан В.В., Тызьо Р.В. Роль активности Na+, K+-АТФазы и уровня pH в регуляции ионной проводимости мембран эмбриональных клеток. Цитология, 1990; 32(9): 924-925.

7. Гойда Е.А., Медына И.Р., Санагурский Д.И., Стельмах Н.С. Характеристики электрофизиологических параметров мембран эмбриональных клеток вьюна при ингибировании Na+, K+-АТФазы. Онтогенез, 1989; 20(2): 164-170.

8. Головчак Н.П. Вплив гіпохлориту натрію на перекисне окиснення ліпідів і системи антиоксидантного захисту головного мозку тварин за експериментального Т-2 токсикозу: автореф. дис. ... канд. біол. наук: спец. 03.00.02 / Головчак Н.П.; ЛНУ ім. І. Франка. - Львів, 2008. 23 с.

9. Головчак Н.П., Коцюмбас Г.І., Бішко О.І., Санагурський Д.І. Прооксидантно-антиоксидантний гомеостаз печінки птиці за дії гіпохлориту натрію різних концентрацій. Фізика живого, 2011; 18(2): 146-152.

10. Головчак Н.П., Тарновська А.В., Санагурський Д.І., Коцюмбас Г.І. Перекисне окиснення ліпідів головного мозку курей за дії гіпохлориту натрію на тлі Т-2 токсикозу. Біофізичні механізми функціонування живих систем. Зб. тез міжнар. наук.-практ. конф. - Львів: ЛНУ ім. І. Франка, 2008: 67-68.

11. Головчак Н.П., Тарновська А.В., Коцюмбас Г.І. та ін. Ефективність впливу гіпохлориту натрію на активність супероксид-дисмутази у головному мозку тварин при експериментальному Т-2 токсикозі. Сучасні проблеми епідеміології, мікробіології та гігієни: Матеріали конф. - Львів, 2006: 87-90.

12. Деркач М.П., Гумецький Р.Я., Чабан М.Е. Курс варіаційної статистики. Київ: Вища школа, 1977. 208 с.

13. Иванов М. Эффект "родного" вещества. Мед. вестник, 1995; 21: 7.

14. Коцюмбас Г.І. Вплив різних розчинів гіпохлориту натрію на динаміку гістоструктурних змін і вміст малонового діальдегіду мозочка поросят при Т-2 токсикозі. Наук. вісник Львів. нац. академії вет. медицини ім. С.З. Гжицького. Львів, 2006; 8(3):103-140.

15. Коцюмбас І.Я. Перспективи застосування гіпохлоритів у ветеринарній медицині. Львів: Афіша, 2009. 312 с.

16. Кушнір Г.В. Фармакологічна дія високочистого натрію гіпохлориту на організм тварин за хронічного Т-2 токсикозу: автореф. дис. ... канд. вет. наук: спец. 16.00.04 / Кушнір Г.В.; Львів. нац. академія вет. медицини ім. С.З. Гжицького. Львів, 2009. 22 с.

17. Луцик М.Д., Кусень С.И., Лукьяненко А.В. Очистка и частичная характеристика плазматических мембран клеток зародышей вьюна. Онтогенез, 1986; 17(3): 314-321.

18. Медына И.Р., Гойда Е.А., Брежестовский П.Д. Механочувствительные калиевые каналы - один из факторов колебаний потенциала покоя в раннем эмбриогенезе вьюна. Биол. мембраны, 1988; 5(9): 960-969.

19. Нейфах А.А., Тимофеева М.Я. Молекулярная биология процессов развития. М.: Наука, 1977. 311 с.

20. Озернюк Н.Д. Изменение АТФ-азной активности в период оогенеза вьюна. Онтогенез, 1971; 2(4): 431-434.

21. Ротт Н.Н. Клеточные циклы в раннем эмбриональном развитии. М.: Наука, 1987. 207 с.

22. Санагурський Д.І. Об'єкти біофізики. Львів: Вид. центр ЛНУ імені Івана Франка, 2008. 522 с.

23. Целевич М.В., Мандзинець С.М., Санагурський Д.І. Na+, K+-АТФ-азна активність мембран зародків в'юна Misqurnus fossilis L. при дії антибіотиків. Фізіол. журнал, 2004; 50(5): 64-68.

24. Шурмакевич Л.Р. Неспецифічна резистентність організму курчат бройлерів при дії розчину високочистого натрію гіпохлориту на тлі вакцинації. Наук. вісник нац. ун-ту біоресурсів та природокористування України, 2011; 151(1): 337-342.

25. Яремкевич О., Перун М., Целевич М.В. та ін. Na+, K+-АТФ-азна активність зародків в'юна in vitro за впливу поверхнево-активного полімеру. Вісн. Львів. ун-ту. Сер. біол, 2008; 47: 32-41.

26. Andreoli Sh., McTeer J., Seifert S., Kempson S. Oxidant-induced alterations in glucose and phosphate transport in LLC-PK1 cells: Mechanism of injury. Am. J. Physiol, 1993; 265: 337-384.
https://doi.org/10.1152/ajprenal.1993.265.3.F377
PMid:8214096

27. Beritashvili D.R., Kutateladze T.V., Margiani D.O., Kafiani K.A. Adenosine triphosphatase in the embryonic development of the loach. Sov. J. Dev. Biol, 1975; 5(4): 320-326.

28. Boldyrev A., Bulygina E., Volynskaya E. et al. Effect of hydrogen peroxide and hypochlorite on the activity of brain. Na,K-ATPase. Biochemistry (Moscow), 1995; 60: 1810-1819.

29. Fiske C. H., Subbarow Y. The Colorimetric Determination of Phosphorus. J. Biol. Chem, 1925; 66: 375-400.

30 Elmoselhi A.B., Butcher A., Samsons E., Grover A.K. Free radicals uncouple the sodium pump in pig coronary artery. Am. J. Physiol, 1994; 266: 720-728.
https://doi.org/10.1152/ajpcell.1994.266.3.C720
PMid:8166235

31. Kong Y., Lesnefsky E., Ye J., Horwitz L. Prevention of lipid peroxidation does not prevent oxidant induced myocardial contractile dysfunction. Am. J. Physiol, 1994; 267: 2371-2377.
https://doi.org/10.1152/ajpheart.1994.267.6.H2371
PMid:7810737

32. Kukreja R.C., Weaver A.B., Hess M.L. Sarcolemmal Na,K-ATPase: Inactivation by neutrophil-derived free radicals and oxidants. Am. J. Physiol, 1990; 259: 1330-1336.
https://doi.org/10.1152/ajpheart.1990.259.5.H1330
PMid:2173423

33. Lees G.J. Inhibition of sodium-potassium-ATPase: A potentially ubiquitous mechanism contributing to central nervous system neuropathology. Brain Res. Rev, 1991; 16: 283-300.
https://doi.org/10.1016/0165-0173(91)90011-V

34. Leong P. K., Manahan D. Metabolic importance of Na+/K+-ATPase activity during sea urchin development. J. Exp. Biol, 1997; 200(15): 2881-2892.

35. Lowry O.H., Rosenbrough N.G., Farr A.L., Randall R.C. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem, 1951; 193: 265-275.

36. Mintorovitch J., Yang G., Shimizu H. et al. Diffusion-weighted magnetic resonance imaging of acute focal ischemia: comparison of signal intensity with changes in brain water and Na, K-ATPase activity. J. Cereb. Blood Flow Metab, 1994; 14: 332-336.
https://doi.org/10.1038/jcbfm.1994.40
PMid:8113328

37. Mitsunaga-Nakatsubo K., Fujiwara A., Yasumasu L. Сhange in the activity of Na+, K+-ATPase in embryos on the sea urchin. Hemicentrotus pulcherrimus, during early development. Dev. Growth Differ, 1992; 34(4): 379-385.
https://doi.org/10.1111/j.1440-169X.1992.00379.x


Refbacks

  • There are currently no refbacks.


Copyright (c) 2011 Studia biologica

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.