ВПЛИВ ТРИВАЛОГО ПЕРОРАЛЬНОГО ВВЕДЕННЯ ТАУРИНУ НА ПОКАЗНИКИ КРОВІ ЩУРІВ

R. Ostapiv, Chr. Skyba, V. Manko

Анотація


Досліджено вплив тривалого перорального введення таурину на фізіолого-біохімічні показники крові щурів як маркери функціонального стану організму тварин. Дослідження проведені на самцях щурів лінії Wistar (n=16) віком 4 місяці та масою 140–160 г. Тварин розділяли на чотири групи (по n=4) – контрольну, щурам якої протягом 28 діб щоденно вводили у стравохід питну воду (контроль), і три дослідні, яким вводили 5 (І дослідна група), 10 (ІІ дослідна група) та 20 (ІІІ дослідна група) мг таурину/кг маси тіла. Встановлено, що у тварин ІІ дослідної групи зростає вміст гемоглобіну як у цільній крові, так і в одному еритроциті. У щурів ІІ та ІІІ дослідних груп швидкість оксигенації гемоглобіну зростає щодо контролю у 1,5 та 2,5 разу відповідно, а концентрація глюкози у плазмі крові знижується на 36,7 та 18,4 %. Вміст холестерину у плазмі крові щурів усіх дослідних груп залишається на рівні контролю, а активність лактатдегідрогенази у цільній крові зростає. У плазмі крові тварин ІІІ дослідної групи знижується активність лужної фосфатази й аланінамінотрансферази. Активність аспартатамінотрансферази у плазмі крові тварин усіх дослідних груп не відрізняється від значень контролю. За таких умов коефіцієнт де Рітіса зростає у щурів І та ІІІ дослідних груп. Обговорюється роль таурину як активатора метаболізму.


Повний текст:

PDF

Посилання


Kamyshnykov V. S. Spravochnyk po klynyko-byokhymycheskym yssledovanyiam y laboratornoi dyahnostyke. M.: MEDpress-ynform, 2004. S. 504–591.

Levchenko V. I., Holovakha V. I., Kondrakhin I. P. Metody laboratornoi klinichnoi diahnostyky khvorob tvaryn / za red. V.I. Levchenka. K.: Ahrarna osvita, 2010. S. 271–292.

Ostapiv R. D., Kystsiv O. S., Manko V. V. Vplyv tryvaloho peroralnoho vvedennia taurynu na fiziolohichni pokaznyky shchuriv // Visn. Lviv. un-tu. Ser. biol. 2015. Vyp. 69. S. 247–255.

Fizioloho-biokhimichni metody doslidzhen u biolohii, tvarynnytstvi ta veterynarnii medytsyni / za red. V.V. Vlizlo. Lviv, 2004. S. 56–66.

Anand P., Rajakumar P., Felix J. W. et al. Effects of oral administration of antioxidant taurine on hematological parameters in Wistar rats // Pakistan J. Biol. Sci. 2010. Vol. 13. P. 785–793. https://doi.org/10.3923/pjbs.2010.785.793

Cherif H., Reusens B., Dahri S. et al. Stimulatory effects of taurine on insulin secretion by fetal rat islets cultured in vitro // J. Endocrinol. 1996. Vol. 151. P. 501–506. https://doi.org/10.1677/joe.0.1510501

El Idrissi A., Okeke E., Yan X. et al. Taurine regulation of blood pressure and vasoactivity // Adv. Exp. Med. Biol. 2013. Vol. 775. P. 407–425. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-6130-2_31

Huxtable R. J. Physiological actions of taurine // Physiol. Rev. 1992. Vol. 72. P. 101–160. https://doi.org/10.1152/physrev.1992.72.1.101

Kaplan M. M. Serum alkaline phosphatase-another piece is added to the puzzle // Hepatology. 1986. Vol. 6. N 3. P. 526–528. https://doi.org/10.1002/hep.1840060334

Lambert I. H., Kristensen D. M., Holm J. B. et al. Physiological role of taurine – from organism to organelle // Acta Physiol. 2015. Vol. 203. P. 191–202. https://doi.org/10.1111/apha.12365

Lang F., Lang E., Föller M. Physiology and pathophysiology of eryptosis // Transfus. Med. Hemother. 2012. Vol. 39. N 5. P. 308–314. https://doi.org/10.1159/000342534

Nandhinia A., Balakrishnana S. D., Anuradha C. V. Taurine improves lipid profile in rats fed a high fructose-diet // Nutrition Research. Vol. 22. P. 343–354. https://doi.org/10.1016/S0271-5317(01)00391-8

Ostapiv R. D., Manko V. V. Antioxidant defense of rat organism at long-term per oral taurine injection // Studia Biologica. Vol. 9. P. 59–70.

Ostapiv R. D., Humenyuk S. L., Manko V. V. Activity and isozyme content of lactate dehydrogenase under long-term oral taurine administration to rats // Ukr. Biochem. J. 2015. Vol. 87. N 4. P. 54–62. https://doi.org/10.15407/ubj87.04.054

Pushpakiran G., Mahalakshmi K., Anuradha C. V. Taurine restores ethanol-induced depletion of antioxidants and attenuates oxidative stress in rat tissues // Amino Acids. 2004. Vol. 27. P. 91–96. https://doi.org/10.1007/s00726-004-0066-8

Reitmann S., Frankel S. A colorimetric mechod for the determination of serum glutamic oxaloacetic and glutamic puruvic transaminases // Amer. J. Clin. Path. 1957. Vol. 28. N 1. P. 56–63. https://doi.org/10.1093/ajcp/28.1.56

Ribeiro R. A. Taurine supplementation enhances nutrient-induced insulin secretion in pancreatic mice islets // Diabetes Metab. Res. Rev. 2009. Vol. 25. N 4. P. 370–379. https://doi.org/10.1002/dmrr.959




DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2017.75.16

Посилання

  • Поки немає зовнішніх посилань.


Bookmark and Share