ОСОБЛИВОСТІ КОНТЕКСТНОГО ВЖИВАННЯ ТА ЗАМІЩЕННЯ КОДОНІВ У ГЕНОМАХ СТРЕПТОМІЦЕТІВ
Анотація
Актинобактерії роду Streptomyces привертають великий інтерес дослідників, оскільки їхні геноми кодують криптичні кластери генів біосинтезу нових антибіотиків. Також гетерологічна експресія метагеномних бібліотек у модельних штамів Streptomyces дає змогу виявляти нові класи сполук. Важливо розуміти правила, які визначають вживання кодонів у генах стрептоміцетів, щоби підвищити шанси і рівень експресії чужорідних генів у Streptomyces. У цьому дослідженні ми розглянули два питання, пов’язаних із вживанням кодонів у геномах стрептоміцетів. По-перше, ми дослідили закономірності вживання дикодонів у Streptomyces. По-друге, ми шукали істотні відмінності в характері заміщеннь кодонів у різних сімействах ортологічних генів на різних філогенетичних відстанях і різного ступеня важливості. Як результат, ми виявили кілька правил контекстного вживання кодонів, які в основному пов’язані з аномальною частотою G/C після C-кінцевого нуклеотиду попереднього кодона. Ми розробили новий інструмент біоінформатики на основі описаного раніше методу “бульбашкових” графіків, що дає змогу візуалізувати закономірності кодонних заміщень у наборі даних у вигляді матриці. Використовуючи цей інструмент, ми виявили, що гени транскрипційних факторів родини AdpA у випадку порядку Streptomycetales несуть частку несинонімічних замін значно більшу, ніж це спостерігається для груп adpA з інших порядків актинобактерій. Характер заміщень кодонів для різних порядків актинобактерій (порівняно зі Streptomycetales) не описується простими залежностями.
Повний текст:
PDF (English)Посилання
Alva V., Nam S. Z., Söding J., Lupas A. N. The MPI bioinformatics Toolkit as an integrative platform for advanced protein sequence and structure analysis // Nucleic Acids Res. 2016. Vol. 44. P. W410–415. https://doi.org/10.1093/nar/gkw348
Azad R. K., Borodovsky M. Probabilistic methods of identifying genes in prokaryotic genomes: connections to the HMM theory // Brief Bioinform. 2004. Vol. 5. P. 118–130. https://doi.org/10.1093/bib/5.2.118
Fickett J. W., Tung C. S. Assessment of protein coding measures // Nucleic Acids Res. 1992. Vol. 25. P. 6441–6450. https://doi.org/10.1093/nar/20.24.6441
Girard G., Traag B.A., Sangal V. et al. A novel taxonomic marker that discriminates between morphologically complex actinomycetes // Open Biol. 2013. Vol. 3. P. 130073. https://doi.org/10.1098/rsob.130073
Goldman N., Yang Z. A codon-based model of nucleotide substitution for protein-coding DNA sequences // Mol. Biol. Evol. 1994. Vol. 11. P. 725–736.
Iqbal H. A., Low-Beinart L., Obiajulu J. U., Brady S. F. Natural product discovery through improved functional metagenomics in Streptomyces // J. Am. Chem. Soc. 2016. Vol. 138. P. 9341–9344. https://doi.org/10.1021/jacs.6b02921
Katz L., Baltz R. H. Natural product discovery: past, present, and future // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2016. Vol. 43. P. 155–176. https://doi.org/10.1007/s10295-015-1723-5
Kulesa A., Krzywinski M., Blainey P., Altman N. Sampling distributions and the bootstrap // Nat. Methods. 2015. Vol. 12. P. 477–478. https://doi.org/10.1038/nmeth.3414
Kuzniar A., van Ham R.C., Pongor S., Leunissen J. A. The quest for orthologs: finding the corresponding gene across genomes // Trends Genet. 2008. Vol. 24. P. 539–551. https://doi.org/10.1016/j.tig.2008.08.009
Moura G., Pinheiro M., Arrais J. et al. Large scale comparative codon-pair context analysis unveils general rules that fine-tune evolution of mRNA primary structure // PLoS One. 2007. Vol. 2. P. e847. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0000847
Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M., UGENE team. Unipro UGENE: a unified bioinformatics toolkit // Bioinformatics. 2012. Vol. 28. P. 1166–1167. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/bts091
Osswald C., Zipf G., Schmidt G. et al. Modular construction of a functional artificial epothilone polyketide pathway // ACS Synth. Biol. 2014. Vol. 3. P. 759–772. https://doi.org/10.1021/sb300080t
Plotkin J.B., Kudla G. Synonymous but not the same: the causes and consequences of codon bias // Nat. Rev. Genet. 2011. Vol. 12. P. 32–42. https://doi.org/10.1038/nrg2899
Pride D. T., Meinersmann R. J., Wassenaar T. M., Blaser M. J. Evolutionary implications of microbial genome tetranucleotide frequency biases // Genome Res. 2003. Vol. 3. P. 145–158. https://doi.org/10.1101/gr.335003
Segata N., Börnigen D., Morgan X. C., Huttenhower C. PhyloPhlAn is a new method for improved phylogenetic and taxonomic placement of microbes // Nat. Commun. 2013. Vol. 4. P. 2304. https://doi.org/10.1038/ncomms3304
Wernersson R., Pedersen A.G. RevTrans: multiple alignment of coding DNA from aligned amino acid sequences // Nucleic Acids Res. 2003. Vol. 31. P. 3537–3539. https://doi.org/10.1093/nar/gkg609
Zarins-Tutt J. S., Barberi T. T., Gao H. et al. Prospecting for new bacterial metabolites: a glossary of approaches for inducing, activating and upregulating the biosynthesis of bacterial cryptic or silent natural products // Nat. Prod. Rep. 2016. Vol. 33. P. 54–72. https://doi.org/10.1039/C5NP00111K
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2017.75.07
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.