ВОЛЬТАМПЕРОМЕТРИЧНЕ ВИЗНАЧЕННЯ ХІНІНУ ТА ЙОГО N-ОКСИДУ З ВИКОРИСТАННЯМ ЕЛЕКТРОДІВ НА ОСНОВІ ТВЕРДОЇ АМАЛЬГАМИ СРІБЛА
Анотація
Уперше розроблено вольтамперометричну методику визначення хініну з використанням електродів на основі твердої амальгами срібла (АЕ). Найбільшого струму та чіткого піку відновлення хініну можна досягнути з використанням АЕ, який модифіковано ртутним меніском (м-АЕ). Хінін відновлюється на м-АЕ з утворенням одного необоротного піку в слабо кислому та в лужному середовищах. Як оптимальне рН обрали рН 8, яке забезпечували універсальною буферною сумішшю. Пік відновлення хініну має адсорбційну природу струму, що сприяє накопиченню аналіту на поверхні електрода. За оптимальних умов отримали градуювальний графік для вольтамперометричного визначення хініну, для якого лінійна залежність струму від концентрації зберігається в межах від 2,0∙10–6 до 2,0∙10–5 М, а межа виявлення становить 1,7∙10–6 М.
Розроблену методику апробували під час аналізу тонізуючих напоїв. Отримані результати статистично опрацювали та підтвердили референтною методикою (методом високоефективної рідинної хроматографії з діодоматричним детектором). Відносна похибка визначення не перевищувала 5 %. Запропонована методика є швидкою, портативною, придатною для рутинного аналізу.
Ключові слова: вольтамперометрія, алкалоїд, хінін, N-оксид хініну, тверді амальгамні електроди.
Повний текст:
PDF (English)Посилання
Kovalenko S. I., Kryvoshey O. V., Vos-Koboinik O. Y., Berest G. G., Bilyi A. K. Antimalarial drugs: quinine and its analogues by pharmacological action: Study guide. Zaporizhzhia: ZSMU Publishing House, 2014. 322 p. (in Ukrainian).
Dar R. A., Brahman P. K., Tiwari S., Pitre K. S. Electrochemical studies of quinine in surfactant media using hanging mercury drop electrode: A cyclic voltametric study // Colloids Surf. B. 2012. Vol. 98. P. 72–79. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2012.04.035
Kovalenko S. I., Kryvoshey O. V., Vos-Koboinik O. Y., Berest G. G., Bilyi A. K. Antimalarial drugs: quinine and its analogues by pharmacological action: Study guide. Zaporizhzhia: ZSMU Publishing House, 2014. P. 58–59 (in Ukrainian).
Dondorp A., Nosten F., Stepniewska K., Day N., White N. Artesunate versus quinine for treatment of severe falciparum malaria: a randomised trial // The Lancet. 2005. Iss. 366 (9487). P. 717–725. DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(05)67176-0
Dushna O., Dubenska L., Marton M., Hatala M., Vojs M. Sensitive and selective voltammetric method for determination of quinoline alkaloid, quinine in soft drinks and urine by applying a boron-doped diamond electrode // Microchem. J. 2023. Vol. 191. P. 108839. DOI: https://doi.org/10.1016/j.microc.2023.108839
Latarissa I. R., Barliana M. I., Meiliana A., Lestari K. Potential of quinine sulfate for COVID-19 treatment and its safety profile: Review // Clin Pharmacol. 2021. Vol. 13. P. 225–234. DOI: https://doi.org/10.2147/CPAA.S331660
Große M., Ruetalo N., Layer M., Hu D., Businger R. et al. Quinine inhibits infection of human cell lines with SARS-CoV-2 // Viruses 2021. Iss. 13 (4). P. 647. DOI: https://doi.org/10.3390/v13040647
Sowunmi A., Salako L. A. Effect of dose size on the pharmacokinetics of orally administered quinine // Eur J. Clin Pharmacol. 1996. Vol. 49. P. 383–386. DOI: 10.1007/BF00203782
REGULATION (EU). 2012. No. 872. https://www.fao.org/faolex/results/details/en/c/LEX-FAOC1
Liles N. W., Page E. E., Liles A. L., Vesely S. K., Raskob G. E., George J. N. Diversity and severity of adverse reactions to quinine: A systematic review // Am. J. Hematol. 2016. Vol. 91. P. 461–466. DOI: https://doi.org/10.1002/ajh.24314
Ohira A., Yamaguchi S., Miyagi T., Yamamoto Y., Yamada S., Shiohira H., Takahashi K. Fixed eruption due to quinine in tonic water: A case report with high-performance liquid chromatography and ultraviolet A analyses // J. Dermatol. 2013. Iss. 40 (8). P. 629–631. DOI: 10.1111/1346-8138.12195
Damien R., Daval S., Souweine B., Deteix P., Eschalier A., Coudoré F. Rapid gas chromatography/mass spectrometry quinine determination in plasma after automated solid-phase extraction // Rapid Commun. Mass Spectrom. 2006. Iss. 20 (17). P. 2528–2532. DOI: 10.1002/rcm.2625
Zaugg S., Thormann W. Capillary electrophoretic separation, immunochemical recognition and analysis of the diastereomers quinine and quinidine and two quinidine metabolites in body fluids // JPBA. 2001. Vol. 24. P. 785–799. DOI: 10.1016/s0731-7085(00)00546-x
Reijenga J. C., Aben G. V., Lemmens A. A., Verheggen T. P., De Bruijn C. H., Everaerts F. M. Determination of quinine in beverages, pharmaceutical preparations and urine by isotachophoresis // J. Chromatogr. B. 1985. Vol. 320. P. 245–252. DOI: 10.1016/s0021-9673(01)90502-3
Ortega-Algar S., Raos-Martos N., Molina-Diaz A. Fluorimetric Flow-Through Sensing of Quinine and Quinidine // Microchim. Acta. 2004. Iss. 147 (4). P. 211–217. DOI: https://doi.org/10.1007/s00604-004-0233-3
Li B., Zhang Z., Wu M. Flow-injection chemiluminescence determination of quinine using on-line electrogenerated cobalt (III) as oxidant // Talanta. 2000. Vol. 51. P. 515–521. DOI: 10.1016/s0039-9140(99)00310-0
Yebra M. C., Cespon R. M. Automatic determination of quinine by atomic absorption spectrometry // Microchem. J. 2000. Vol. 65. P. 81–86. DOI: https://doi.org/10.1016/S0026-265X(00)00034-5
Kamel A. H., Sayour H. E. M. Flow-through assay of quinine using solid contact potentiometric sensors based on molecularly imprinted polymers // Electroanalysis. 2009. Vol. 21. P. 2701–2708. DOI: https://doi.org/10.1002/elan.200904699
Thomas F. G., Gierst L. On the electrochemical behaviour of quinine at the mercury electrode in aqueous solutions // J. Electroanal. Chem. Interf. Electrochem. 1983. Vol. 154. P. 239–260. DOI: https://doi.org/10.1016/S0022-0728(83)80545-2
Awasthi S., Srivastava A., Singla M. L. Voltammetric determination of citric acid and quinine hydrochloride using polypyrrole–pentacyanonitrosylferrate/platinum electrode // Synth. Met. 2011. Vol. 161. P. 1707–1712. DOI: https://doi.org/10.1016/j.synthmet.2011.06.009
Zhan X. M., Liu L. H., Gao Z. N. Electrocatalytic oxidation of quinine sulfate at a multiwall carbon nanotubes-ionic liquid modified glassy carbon electrode and its electrochemical determination // J. Solid State Electrochem. 2011. Vol. 15. P. 1185–1192. DOI: https://doi.org/10.1007/s10008-010-1184-8
Buleandra M., Rabinca A. A., Cheregi M. C., Ciucu A. A. Rapid voltammetric method for quinine determination in soft drinks // Food Chemistry. 2018. Vol. 253. P. 1–4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2018.01.130
Rudnicki K., Sobczak K., Borgul P., Skrzypek S., Poltorak, L. Determination of quinine in tonic water at the miniaturized and polarized liquid-liquid interface // Food Chem. 2021. Vol. 364. P. 130417. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130417
Dmukhailo A., Tvorynska S., Dubenska L. Rapid and straightforward electrochemical approach for the determination of the toxic food azo dye tartrazine using sensors based on silver solid amalgam // J. Electroanal. Chem. 2023. Vol. 932. 117250. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jelechem.2023.117250
Barek J. Voltammetric and amperometric applications of silver amalgam electrodes for monitoring of reducible organic compounds // TrAC. 2024. Vol. 170. 117416. DOI: https://doi.org/10.1016/j.trac.2023.117416
Yosypchuk B., Barek J. Analytical applications of solid and paste amalgam electrodes // Crit. Rev. Anal. Chem. 2009. Vol. 39. Р.189–203. DOI: https://doi.org/10.1080/10408340903011838
Yosypchuk B., Novotny L. Electrodes of nontoxic solid amalgams for electrochemical measurements // Electroanalysis. 2002. Vol. 14. P. 1733–1738. DOI: https://doi.org/10.1002/elan.200290018
Yosypchuk B., Novotny L. Nontoxic electrodes of solid amalgams // Crit. Rev. Anal. Chem. 2002. Vol. 32. Р. 141–151. DOI: https://doi.org/10.1080/10408340290765498
Yosypchuk B., Barek J., Yosypchuk O. Preparation and properties of reference electrodes based on silver paste amalgam // Electroanalysis. 2011. Vol. 23. Р. 2226–2231. DOI: https://doi.org/10.1002/elan.201100143
Inczedy J., Lengyel T., Ure A. M. IUPAC Compendium on Analytical Nomenclature: Definitive Rules, 3rd Edition. Blackwell Science, 1998.
Dubenska L., Dushna O., Pysarevska S. et al. A new approach for voltammetric determination of nefopam and its metabolite // Electroanalysis. 2020. Vol. 32, No. 3. P. 626–634. DOI: https://doi.org/10.1002/elan.201900595
Dubenska L., Dushna O., Plyska М. et al. Method of polarographic determination of platyphylline in a form of N-oxide and its validation in solution for injection // Methods Objects Chem. Anal. 2020. Vol. 15, No. 2. P. 83–92. DOI: https://doi.org/10.17721/moca.2020.83-92
Dushna O., Dubenska L., Plotycya S. et al. The alternative voltammetric method for the determination of nicotine and its metabolite nicotine N-oxide // J. Electrochem. Soc. 2022. Vol. 169 (1), No. 016513. DOI: https://doi.org/10.1149/1945-7111/ac4b26
Dubenska L., Dushna O., Blazheyevskіy M. et al. Kinetic and polarographic study on atropine N-oxide: its obtaining and polarographic reduction // Chem. Pap. 2021. Vol. 75. P. 4147–4155. DOI: https://doi.org/10.1007/s11696-021-01638-3
Dushna О., Dubenska L., Blazheyevskіy М. Polarographic determination of anabasine in а form of its N-oxide in urine // Visnyk Lviv Univ. Ser. Chem. 2024. Iss. 65. P. 142–154 DOI: https://doi.org/10.30970/vch.6501.142
Gosser D. K. Cyclic Voltammetry: Simulation and Analysis of Reaction Mechanisms // Synth. React. Inorg. Met.-Org. Chem. 1994. Vol. 24. P. 1237–1238. DOI: https://doi.org/10.1080/00945719408001398
Brett C. B. A. Electrochemistry Principles, Methods, and Applications (first ed.). Oxford Science Publications. 1993.
Dushna O., Dubenska L., Gawor A., Karasińki J. et al. Structural Characterization and Electrochemical Studies of Selected Alkaloid N-Oxides // Molecules. 2024. Vol. 29. P. 2721. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules29122721
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vch.6601.122
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.