Вісник Львівського університету. Серія біологічна

Одне із важливих джерел отримання біологічно активних компонентів для розробки нових антидіабетичних препаратів – це рослинна сировина. Перспективними серед таких рослин є представники роду Cornus. Плоди найпоширенішого в Україні виду Cornus mas L. вживають у їжу і використовують у народній медицині. Із плодів дерену отримують екстракти з високим вмістом біологічно активних речовин. Екстракти можуть стати альтернативною терапією за цукрового діабету, адже введення їх у щоденний раціон сприяє профілактиці цього захворювання й уникненню ускладнень. Важливою біомедичною проблемою за цукрового діабету є дисбаланс усіх обмінів речовин і розвиток оксидативного стресу, які призводять до супутніх інфекційно-запальних захворювань. Запобігти розвиткові супутніх ускладнень можна способом нормалізації функціональної активності лейкоцитів крові. Тому метою цієї роботи було дослідити рівень маркерних показників, які характеризують ступінь розвитку оксидативного стресу, в лейкоцитах крові щурів зі стрептозотоцин-індукованим ЦД за перорального введення екстракту плодів дерену справжнього сортів `Yantarnyi´ та `Flava´ у дозі 20 мг/кг маси тіла упродовж 14 днів. Проведено дослідження впливу екстракту плодів дерену справжнього сортів `Yantarnyi´ та `Flava´ на активність прооксидантного ензиму мієлопероксидази, інтенсивність перекисного окиснення ліпідів, формування альдегідо- та кетопохідних окисної модифікації білків, накопичення кінцевих продуктів оксидації білків і концентрацію відновленого глутатіону в лейкоцитах периферичної крові щурів за діабет-асоційованого оксидативного стресу. Встановлено, що екстракт плодів дерену пригнічує оксидативний ISSN 0206-5657. Вісник Львівського університету. Серія біологічна. 2026. Випуск 96. С. 3–14 Visnyk of the Lviv University. Series Biology. 2026. Issue 96. P. 3–14 © І. Бродяк, Н. Сибірна, 2026 стрес, про що свідчить підвищення концентрації відновленого глутатіону, зниження вмісту ТБК-активних продуктів і окисно-модифікованих білків до значень у контрольній групі. У лейкоцитах крові екстракт нормалізував концентрацію кінцевих продуктів оксидації білків. За введення екстракту підвищувалася активність мієлопероксидази в лейкоцитах крові щурів із діабетом і знижувалася активність цього ензиму у плазмі крові. Нормалізація біомаркерів оксидативного стресу в лейкоцитах крові щурів зі стрептозотоцин-індукованим діабетом вказує на антиоксидантні властивості екстракту плодів дерену справжнього сортів `Yantarnyi´ та `Flava´, стиглі плоди якого містять значну кількість іридоїдів, фенольних кислот і флавонолів. Одержані результати свідчать про перспективність використання екстракту як компонента антидіабетичних препаратів із антиоксидантною дією.

стрептозотоцин-індукований цукровий діабет, лейкоцити, маркерні показники оксидативного стресу, екстракт плодів дерену справжнього сортів `Yantarnyi´ та `Flava´, антиоксидантна активність

1. Abdelazim M., Abomughaid M. M. Oxidative stress: an overview of past research and future insights // All Life. 2024. Vol. 17. P. 2316092. https://doi.org/10.1080/26895293.2024.231 6092

2. Abirami A., Sinsinwar S., Rajalakshmi P. et al. Antioxidant and cytoprotective properties of loganic acid isolated from seeds of Strychnos potatorum L. against heavy metal induced toxicity in PBMC model // Drug and Chemical Toxicology. 2019. Р. 1–11. https://doi.org/1 0.1080/01480545.2019.1681445

3. Banjarnahor S. D. S., Artanti N. Antioxidant properties of flavonoids // Med. J. Indones. 2015. Vol. 23. Р. 239–244. https://doi.org/10.13181/mji.v23i4.1015

4. Blagojević B., Agić D., Serra A. T. et al. An in vitro and in silico evaluation of bioactive potential of cornelian cherry (Cornus mas L.) extracts rich in polyphenols and iridoids // Food Chem. 2021. Vol. 335. P. 127619. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127619

5. Chaachouay N., Zidane L. Plant-derived natural products: a source for drug discovery and development // Drugs and Drug Candidates. 2024. Vol. 3. P. 84–207. https://doi.org/10.3390/ ddc3010011

6. Chakravarty S., Rizvi S. I. Day and night GSH and MDA levels in healthy adults and effects of different doses of melatonin on these parameters // Int. J. Cell Biol. 2011. Vol. 2011. Р. 404591. https://doi.org/10.1155/2011/404591

7. Darmaun D., Smith S. D., Sweeten S. et al. Evidence for accelerated rates of glutathione utilization and glutathione depletion in adolescents with poorly controlled type 1 diabetes // Diabetes. 2005. Vol. 54. Р. 190–196. https://doi.org/10.2337/diabetes.54.1.190

8. Demkovych A., Bondarenko Y., Hasiuk P. A. Oxidative modification of proteins in the process of experimental periodontitis development // Interv. Med. Appl. Sci. 2017. Vol. 9. Р. 218–221. https://doi.org/10.1556/1646.9.2017.28

9. Dzydzan O., Bila I., Kucharska A. Z. et al. Antidiabetic effects of extracts of red and yellow fruits of cornelian cherries (Cornus mas L.) on rats with streptozotocin-induced diabetes mellitus // Food Funct. 2019. Vol. 10. Р. 6459–6472. https://doi.org/10.1039/C9FO00515C

10. Dzydzan O., Brodyak I., Sokół-Łętowska A. et al. Loganic acid, an iridoid glycoside extracted from Cornus mas L. fruits, reduces of carbonyl/oxidative stress biomarkers in plasma and І. Бродяк, Н. Сибірна ISSN 0206-5657. Вісник Львівського університету. Серія біологічна. 2026. Випуск 96 11 restores antioxidant balance in leukocytes of rats with streptozotocin-Induced diabetes mellitus // Life. 2020. Vol. 10. P. 349. https://doi.org/10.3390/life10120349

11. Francenia Santos-Sánchez N., Salas-Coronado R., Villanueva-Cañongo C., HernándezCarlos B. Antioxidant compounds and their antioxidant mechanism. In E. Shalaby (Ed.). Antioxidants. IntechOpen, 2019. https://doi.org/10.5772/intechopen.85270

12. Ghasemi-Dehnoo M., Amini-Khoei H., Lorigooini Z., Rafieian-Kopaei M. Oxidative stress and antioxidants in diabetes mellitus // Asian Pac. J. Trop. Med. 2020. Vol. 13. P. 431–438. https://doi.org/10.4103/1995-7645.291036

13. González P., Lozano P., Ros G., Solano F. Hyperglycemia and oxidative stress: an integral, updated and critical overview of their metabolic interconnections // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24. P. 9352. https://doi.org/10.3390/ijms24119352

14. Gryszczyńska B., Formanowicz D., Budzyń M. et al. Advanced oxidation protein products and carbonylated proteins as biomarkers of oxidative stress in selected atherosclerosis-mediated diseases // BioMed Res. Int. 2017. Vol. 2017. P. 1–9. https://doi.org/10.1155/2017/4975264

15. Ito F., Sono Y., Ito T. Measurement and clinical significance of lipid peroxidation as a biomarker of oxidative stress: oxidative stress in diabetes, atherosclerosis, and chronic inflammation // Antioxidants. 2019. Vol. 8. Р. 72. https://doi.org/10.3390/antiox8030072

16. Kang J., Guo C., Thome R. et al. Hypoglycemic, hypolipidemic and antioxidant effects of iridoid glycosides extracted from Corni fructus: Possible involvement of the PI3K–Akt/PKB signaling pathway // RSC Advances. 2018. Vol. 8. Р. 30539–30549. https://doi.org/10.1039/ C8RA06045B

17. Krawisz J. E., Sharon P., Stenson W. F. Quantitative assay for acute intestinal inflammation based on myeloperoxidase activity. Assessment of inflammation in rat and hamster models // Gastroenterol. 1984. Vol. 87. Р. 1344–1350.

18. Kuchurka О. М., Chaban М. O., Dzydzan O. V. et al. Leukocytes in type 1 diabetes mellitus: the changes they undergo and induce // Studia Biologica. 2022. Vol. 16. Р. 47–66. https://doi. org/10.30970/sbi.1601.674

19. Lowry O. H., Rosebrough N. J., Farr A. L., Randall R. J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193. Р. 265–275.

20. Magliano D., Boyko E. J. Diabetes Atlas: 11th Ed. International Diabetes Federation: Brussels, 2025.

21. Mertoglu C., Siranli G., Coban T. A. et al. The role of protein oxidation in the development of diabetic microvascular complications // North. Clin. Istanb. 2021. Vol. 8. P. 500–506. https://doi.org/10.14744/nci.2021.33341

22. Mouri Mi., Badireddy M. Hyperglycemia. In StatPearls; StatPearls Publishing: Treasure Island (FL), 2026.

23. Osman A. A. M., Seres-Bokor A., Ducza E. Diabetes mellitus therapy in the light of oxidative stress and cardiovascular complications // J. Diabetes Complicat. 2025. Vol. 39. P. 108941. https://doi.org/10.1016/j.jdiacomp.2024.108941

24. Sapra A., Bhandari P. Diabetes. In StatPearls; StatPearls Publishing: Treasure Island (FL), 2026.

25. Seniv M. B., Dzydzan O. V., Brodyak I. V. et al. Antioxidant effect of extract of yellow fruits of cornelian cherry (Cornus mas L.) in rats’ leukocytes under streptozotocin-induced diabetes mellitus // Studia Biologica. 2021. Vol. 15. Р. 15–26. https://doi.org/10.30970/sbi.1501.645

26. Strugała P., Dzydzan O., Brodyak I. et al. Antidiabetic and antioxidative potential of the blue congo variety of purple potato extract in streptozotocin-induced diabetic rats // Molecules. 2019. Vol. 24. Р. 3126. https://doi.org/10.3390/molecules24173126 І. Бродяк, Н. Сибірна 12 ISSN 0206-5657. Вісник Львівського університету. Серія біологічна. 2026. Випуск 96

27. Taylor E. L., Armstrong K. R., Perrett D. et al. Optimisation of an advanced oxidation protein products assay: its application to studies of oxidative stress in diabetes mellitus // Oxid. Med. Cell. Longev. 2015. Vol. 2015. Р. 496271. https://doi.org/10.1155/2015/496271

28. Unubol M., Yavasoglu I., Kacar F. et al. Relationship between glycemic control and histochemical myeloperoxidase activity in neutrophils in patients with type 2 diabetes // Diabetol. Metab. Syndr. 2015. Vol. 7. Р. 119. https://doi.org/10.1186/s13098-015-0115-3