Вплив триптофану на гістоморфометричні зміни бурої жирової тканини щурів
Анотація
Літературні дані про вплив триптофану на буру жирову тканину (БЖТ) неоднозначні. Переважно досліджували його роль на БЖТ за наявної патології в організмі, насамперед – за ожиріння. Проте ефект використання триптофану на функціонування здорової БЖТ є мало дослідженим. Мета цієї роботи – вивчити вплив L-триптофану на гістоморфометричні показники БЖТ здорових щурів.Дослідження проводили на самцях щурів лінії Wistar, вік яких на початку експерименту становив 3 міс. Щурів розподілили на дві групи по 12 тварин у кожній: І група – контроль, ІІ група – дослідні тварини, які щодня перорально отримували L-триптофан у дозі 80 мг/кг маси тіла. Роботу зі щурами проводили відповідно до принципів Гельсінської декларації. З міжлопаткових тіл БЖТ виготовляли гістологічні препарати за стандартною методикою. З мікропрепаратів БЖТ робили фотознімки за допомогою цифрової камери. Гістоморфометрію здійснювали на цифрових зображеннях за допомогою комп’ютерної програми «Image J». Під час гістоморфометричного аналізу БЖТ щурів, які отримували L-триптофан, виявлено зростання кількості адипоцитів з однією великою ліпідною краплею (у 12 разів) та меншу кількість власне бурих адипоцитів (у 1,5 рази). Зростали розміри адипоцитів за рахунок збільшення площі ліпідних крапель (на 174 %), розташованих у цитоплазмі. Зниження площі ядра, ядерно-цитоплазматичного співвідношення, кількості ядерець вказує на пригнічення синтетичної активності адипоцитів. Також у БЖТ цих щурів виявили зростання відносної площі сполучної тканини (на 13 %) та зменшення площі судин (на 27 %), що свідчить про гіршу перфузію, пригнічення транспорту кисню до паренхіматозних елементів, погіршення умов для перебігу процесів метаболізму. Отже, 28-добовий вплив L-триптофану має морфологічні ознаки зниження функціональної активності БЖТ у здорових щурів і призводить до процесу її «відбілювання» – переродження у білу жирову тканину. Тому, незважаючи на досліджений позитивний ефект триптофану на більшість органів, його слід вживати обережно, щоб не зашкодити функціонуванню БЖТ.
Ключові слова
Повний текст:
PDFПосилання
Cinti S., Zingaretti M. C., Cancello R. et al. Morphologic techniques for the study of brown adipose tissue and white adipose tissue // Methods Mol. Biol. 2001. Vol. 155. P. 21–51. DOI: 10.1385/1-59259-231-7:021.
Dubois M. L., Boisvert F. M. The nucleolus: structure and function // The Functional Nucleus. 2016. Vol. 23. P. 29–49. DOI: 10.1007/978-3-319-38882-3_2.
Halpern B., Mancini M. C., Bueno C. et al. Melatonin increases brown adipose tissue volume and activity in patients with melatonin deficiency: A proof-of-concept study // Diabetes. 2019. Vol. 68. N 5. P. 947–952. DOI: 10.2337/db18-0956.
Kałużna-Czaplińska J., Gątarek P., Chirumbolo S. et al. How important is tryptophan in human health? // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019. Vol. 59. N 1. P. 72–88. DOI: 10.1080/10408398.2017.1357534.
Kesić M., Baković P., Farkaš V. et al. Constitutive serotonin tone as a modulator of brown adipose tissue thermogenesis: A rat study // Life. 2023. Vol. 13. N 7. P. 1436. DOI: 10.3390/life13071436.
Kulterer O. C., Herz C. T., Prager M. et al. Brown adipose tissue prevalence is lower in obesity but its metabolic activity is intact // Front. Endocrinol. (Lausanne). 2022. Vol. 31. N 13. P. 858417. DOI: 10.3389/fendo.2022.858417.
Lizcano F. The beige adipocyte as a therapy for metabolic diseases // Int. J. Mol. Sci. 2019. Vol. 20. N 20. P. 5058. DOI: 10.3390/ijms20205058.
Navarro-Alarcón M., Ruiz-Ojeda F., Blanca-Herrera R. et al. Melatonin and metabolic regulation: A review. Food Funct. 2014. Vol. 5. N 11. P. 2806–2832. DOI: 10.1039/c4fo00317a.
Platten M., Nollen E. A., Röhrig U. F. et al. Tryptophan metabolism as a common therapeutic target in cancer, neurodegeneration and beyond // Nat. Rev. Drug Discov. 2019. Vol. 18. N 5. P. 379–401. DOI: 10.1038/s41573-019-0016-5.
Reddy N. L., Tan B. K., Barber T. M. et al. Brown adipose tissue: endocrine determinants of function and therapeutic manipulation as a novel treatment strategy for obesity // BMC Obes. 2014. N 1. P. 13. DOI: 10.1186/s40608-014-0013-5.
Rehfeld A., Nylander M., Karnov K. Histological Methods. In: Compendium of Histology. Springer, Cham. 2017. DOI: 10.1007/978-3-319-41873-5_2.
Saito M., Okamatsu-Ogura Y. Thermogenic brown fat in humans: implications in energy homeostasis, obesity and metabolic disorders // World J. Mens Health. 2023. Vol. 41. N 3. P. 489–507. DOI: 10.5534/wjmh.220224.
Schneider C. A., Rasband W. S., Eliceiri K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis // Nat. Methods. 2012. Vol. 9. N 7. P. 671–675. DOI: 10.1038/nmeth.2089.
Shinde A.B., Song A., Wang Q.A. Brown adipose tissue heterogeneity, energy metabolism, and beyond // Front. Endocrinol. 2021. N 12. P. 651763. DOI: 10.3389/fendo.2021.651763.
Tan D.X., Manchester L.C., Fuentes-Broto L. et al. Significance and application of melatonin in the regulation of brown adipose tissue metabolism: Relation to human obesity // Obes. Rev. 2011. Vol. 12. N 3. P. 167–188. DOI: 10.1111/j.1467-789X.2010.00756.x.
Xu L., Li D., Li H. et al. Suppression of obesity by melatonin through increasing energy expenditure and accelerating lipolysis in mice fed a high-fat diet // Nutr. Diabetes. 2022. Vol. 12. N 1. P. 42. DOI: 10.1038/s41387-022-00222-2.
Xu Z., You W., Liu J. et al. Elucidating the regulatory role of melatonin in brown, white, and beige adipocytes // Adv. Nutr. 2020. Vol. 11. N 2. P. 447–460. DOI: 10.1093/advances/nmz070.
Xue C., Li G., Zheng Q. et al. Tryptophan metabolism in health and disease // Cell Metab. 2023. Vol. 35. N 8. P. 1304–1326. DOI: 10.1016/j.cmet.2023.06.004.
Yanko R., Levashov M., Chaka O.G. et al. Tryptophan prevents the development of non-alcoholic fatty liver disease // Diabetes Metab. Syndr. Obes. 2023. Vol. 16. P. 4195–4204.
DОІ: 10.2147/DMSO.S444278.
DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2024.93.09
Посилання
- Поки немає зовнішніх посилань.
