ЛІПІДНИЙ СКЛАД ПЛАЗМИ КРОВІ ЩУРІВ ЗА ДІЇ ЕТИЛТІОСУЛЬФАНІЛАТУ І ХРОМ (VI)-ІНДУКОВАНОЇ ТОКСИЧНОСТІ

B. Kotyk, R. Iskra

Анотація


Етилтіосульфанілат (ЕТС) – це синтетична сульфуроорганічна сполука, що належить до класу речовин тіосульфонатів, які є структурними аналогами природних біологічно активних речовин (БАР) рослинного походження. Тіосульфонати, в т. ч. ЕТС, впливають на регуляцію про/антиоксидантного статусу, ліпідного та білкового обміну у тканинах щурів. Сполуки Cr(VI) характеризуються потужними прооксидантними властивостями та високою токсичністю щодо клітин живих організмів. Токсична дія Сr(VI)-індукованого оксидативного стресу супроводжується порушеннями механізмів ліпідного обміну, проте методи корекції цих порушень достатньо не досліджені. Тому метою роботи було дослідити вплив ЕТС на ліпідний склад плазми крові щурів за дії K2Cr2O7-індукованої токсичності. Лабораторних тварини ділили на 7 груп. Тварини І групи отримували внутрішньоочеревинно щоденно 150 мкл фізрозчину протягом 7-ми діб. Дослідним групам III та IV вводили K2Cr2O7 внутрішньоочеревинно щоденно в дозі 2,5 мг Cr(VI)/кг маси тіла, протягом 7-ми (III група) та 14-ти діб (IV група). Щури ІІ групи отримували внутрішньошлунково щоденно 1000 мкл соняшникової олії протягом 14-ти діб, після цього внутрішньоочеревинно щоденно їм вводили 150 мкл фізіологічного розчину протягом 7-ми діб. Олійний розчин ЕТС із розрахунку 100 мг/кг маси тіла вводили тваринам V групи внутрішньошлунково щоденно протягом 14-ти діб, після цього внутрішньоочеревинно щоденно вводили 150 мкл фізіологічного розчину протягом 7-ми діб. Тваринам VI та VII груп внутрішньошлунково вводили олійний розчин ЕТС із розрахунку 100 мг/кг маси тіла щоденно протягом 14-ти діб, після цього внутрішньоочеревинно щоденно вводили K2Cr2O7 у дозі 2,5 мг Cr(VI)/кг маси тіла протягом 7-ми (VI група) та 14-ти діб (VII група). Тварин декапітували за тіопенталової анестезії, після чого проводили забір крові та розділення її на еритроцити і плазму. Дія Сr(VI) упродовж 7-ми (III група) та 14-ти діб (IV група) призводила до накопичення вмісту загальних ліпідів і триацилгліцеролів у плазмі крові щурів, а відсоток неестерифікованого холестеролу, навпаки, знижувався. ЕТС частково компенсує Cr(VI)-індуковану токсичність за рахунок пригнічення процесів накопичення вмісту загальних ліпідів (VI, VII групи) і триацилгліцеролів (VI група).

Ключові слова


ліпідний склад; тіосульфонати;етилтіосульфанілат; біхромат калію

Повний текст:

PDF

Посилання


Alijagic A., Islamagic E., Focak M., Suljevic D. Effects of trivalent and hexavalent dietary chromium on blood biochemical profile in Japanese quails // Bulg. J. Vet. Med. 2017. Vol. 21. N 4. P. 1-18. https://doi.org/10.15547/bjvm.1095

Alya A., Ines D.B., Montassar L. et al. Oxidative stress, biochemical alterations, and hyperlipidemia in female rats induced by lead chronic toxicity during puberty and post puberty periods // Iran. J. Basic. Med. Sci. 2021. Vol. 18. N 10. P. 1034-1043.

Anyanwu B. O., Orish C. N., Ezejiofor A. N. et al. Protective Effect of Costus afer Aqueous Leaf Extract (CALE) on Low-Dose Heavy Metal Mixture-Induced Alterations in Serum Lipid Profile and Hematological Parameters of Male Wistar Albino Rats // Hindawi Journal of Toxicology. 2020. P. 13. https://doi.org/10.1155/2020/8850264

Cheng B., Li T., Li F. Use of Network Pharmacology to Investigate the Mechanism by Which Allicin Ameliorates Lipid Metabolism Disorder in HepG2 Cells // Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2021. P. 11. https://doi.org/10.1155/2021/3956504

Feng H., Ha F., Hu G. et al. Concentration of chromium in whole blood and erythrocytes showed different relationships with serum apolipoprotein levels in Cr(VI) exposed subjects // J. Trace Elem. Med. Biol. 2018. Vol. 50. P. 384-392. https://doi.org/10.1016/j.jtemb.2018.08.003

Folch J., Lees M., Stanley G. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226. N 1. P. 497-509. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(18)64849-5

García-Ruiz C., Ribas V., Baulies A., Fernández-Checa C. Mitochondrial Cholesterol and the Paradox in Cell Death // Handb Exp. Pharmacol. 2017. Vol. 240. P. 189-210. https://doi.org/10.1007/164_2016_110

Hassan M., Abd-Elwahab M., Megahed R., Mohammed A. An Evaluation of Hepatotoxicity, Nephrotoxicity, and Genotoxicity Induced by Acute Toxicity of Hexavalent Chromium and Comparison of the Possible Protective Role of Selenium and Vitamin E on These Effects // Ain Shams J. Forensic Med. Clin. Toxicol. 2019. Vol. 33. N 2. P. 48-58. https://doi.org/10.21608/ajfm.2019.36574

Kates M. Techniques of lipidology. Amsterdam // Elsevier. 1986. Vol. 451. P. 13.

Kondrakhin I. P., Kurilov N. V., Malakhov A. G. Clinical laboratory diagnostics in veterinary science. M: Agropromizdat, 1985. P. 287.

Kotyk B. І., Iskra R. Ya., Slivinska O. M. et al. Effect of ethylthiosulfаnylate and chrome(VI) on the pro/antioxidant system in rats blood // The Animal Biology. 2019. Vol. 21. N 4. P. 38-45. https://doi.org/10.15407/animbiol21.04.038

Kotyk B. І., Iskra R. Ya., Slivinska O. M. et al. Effects of ethylthiosulfanylate and chromium (VI) on the state of pro/antioxidant system in rat liver // The Ukrainian Biochemical Journal. 2020. Vol. 92. N 5. P. 78-86. https://doi.org/10.15407/ubj92.05.078

Li J., Zheng X., Ma X. et al. Melatonin protects against chromium(VI)-induced cardiac injury via activating the AMPK/Nrf2 pathway // J. Inorg. Bioch. 2019. Vol. 197. P. 1-10. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2019.110698

Li X., He S., Zhou J. et al. Cr(VI) induces abnormalities in glucose and lipid metabolism through ROS/Nrf2 signaling // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2021. Vol. 219. P. 123-131. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2021.112320

Lubenets V. I., Havryliak V. V., Pylypets A. Z., Nakonechna A. V. Changes in the spectrum of proteins and phospholipids in tissues of rats exposed to thiosulfonates // Regul. Mech. Biosyst. 2018. Vol. 9. N 4. P. 495-500. https://doi.org/10.15421/021874

Lubenets V., Karpenko O., Ponomarenko M. et al. Development of new antimicrobial compositions of thiosulfonate structure // Chem. Chem. Technol. 2013. Vol. 7. P. 119-124. https://doi.org/10.23939/chcht07.02.119

Lv Y., Jiang H., Li S. et al. Sulforaphane prevents chromium-induced lung injury in rats via activation of the Akt/GSK-3β/Fyn pathway // Environ. Pollut. 2020. Vol. 259. P. 1-11. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2019.113812

Machado A.B., Caprara J.F., Diehl de Franceschi I. et al. Effects of chronic exposure to hexavalent chromium in water on oxidative stress parameters in Wistar rats // Acta Sci. Biol. Sci. 2019. Vol. 41. N 1. P. 1-10. https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v41i1.43771

Pylypets A. Z., Iskra R. Ya., Havryliak V. V. et al. Effects of thiosulfonates on the lipid composition of rat tissues // The Ukrainian Biochemical Journal. 2017. Vol. 89. N 6. P. 56-62. https://doi.org/10.15407/ubj89.06.056

Sahar H. O., Sherif M. S. Ameliorative effects of grape seed oil on chromium-induced nephrotoxicity and oxidative stress in rats // Slov. Vet. Res. 2020. Vol. 53. N 3. P. 1-13.

Saptarshi C., Doktorova M. Molugu T. et al. How cholesterol stiffens unsaturated lipid membranes // PNAS. 2020. Vol. 117. N 36. P. 21896-21905. https://doi.org/10.1073/pnas.2004807117

Shun C-H., Yuan T-H., Hung S-H. et al. Assessment of the hyperlipidemia risk for residents exposed to potential emitted metals in the vicinity of a petrochemical complex // Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2021. Vol. 28. N 22. P. 27966-27975. https://doi.org/10.1007/s11356-021-12642-1




DOI: http://dx.doi.org/10.30970/vlubs.2021.85.02

Посилання

  • Поки немає зовнішніх посилань.


Bookmark and Share