INFLUENCE OF IP3 ON ATPase ACTIVITY OF RAT HEPATOCYTES MEMBRANE VESICULES AFTER PERFUSION OF LIVER BY INSULIN-CONTAINING SOLUTION

S. Bychkova, T. Chorna


DOI: http://dx.doi.org/10.30970/sbi.0601.193

Abstract


The influence of IP3 on Ca2+-, Na+,K+-ATPase and basal Mg2+-ATPase activity of rat hepatocytes membranes was studied in control and after perfusion of liver by insulin-containing solution. It was established that in control, IP3 increased specific activity of Ca2+-ATPase by (56 ± 13)% (Р < 0.05, n = 6) and basal Mg2+-ATPase by (52 ± 10)% (Р < 0.01, n = 6). After perfusion of liver with insulin-containing solution, it was found that application of IP3 to membrane vesicules of hepatocytes caused only increase in basal Mg2+-ATPase activity by (68 ± 12)% (Р ≤ 0.01, n = 5). IP3 did not cause changes in Na+,K+-ATPase specific activity in control, or after liver perfusion by the insulin-containing solution. At the same time the perfusion of liver by the insulin-containing solution preveanted IP3-induced increase specific activity of Ca2+-ATPase and no effect on IP3-induced increase in the activity of basal Mg2+-ATPase.


Keywords


IP3, ATPase activity, rat hepatocytes, insulin

References


1. Бичкова С.В. Вікові особливості взаємодії між внутрішньоклітинними Сa2+-транспортувальними системами пермеабілізованих гепатоцитів щурів. Вісник Львів. ун-ту. Сер. біол, 2008; 48: 146-152.

2. Бичкова С.В. Вплив інсуліну на функціонування внутрішньоклітинних Сa2+-транспортувальних систем пермеабілізованих гепатоцитів щурів. Вісник Львів. ун-ту. Сер. біол, 2009; 49: 174-181.

3. Костерін С.О., Векліч Т.О., Прилуцький Ю.І. та ін. Кінетичне тлумачення рН-залежності ферментативної активності «базальної» Mg2+-АТФ-ази сарколеми гладенького м'яза. Укр. біохім. журнал, 2005, 77(6): 37.

4. Чорна Т.І., Бичкова С.В. Вплив ріанодину на АТФ-азну активність мембран гепатоцитів щурів після перфузування печінки інсуліновмісним розчином. Вісник Львів. ун-ту. Сер. біол, 2011; 55: 170-178.

5. Barritt G.J, Chen J., Rychkov G.Y. Ca2+-permeable channels in the hepatocyte plasma membrane and their roles in hepatocyte physiology. Biochimica et Biophysica Acta, 2008; 1783(5): 651-672.
https://doi.org/10.1016/j.bbamcr.2008.01.016
PMid:18291110

6. Blitzer B.L., Hostetler B. R., Scott K. A. Hepatic adenosine triphosphate-dependent Ca2+ transport is mediated by distinct carriers on rat basolateral and canalicular membranes. J. Clin. Invest, 1989; 83: 1319-1325.
https://doi.org/10.1172/JCI114018
PMid:2703534 PMCid:PMC303824

7. Benzeroual K., van de Werve G., Meloche S. et al. Insulin induces Ca2+ influx into isolated rat hepatocyte couplets. Am. J. Physiol,1997; 272 (6: Pt 1): G1425-1432.
https://doi.org/10.1152/ajpgi.1997.272.6.G1425
PMid:9227478

8. Fiske C. H., SubbaRow Y. The colometric determination of phosphorus. J. Biol. Chem, 1925; 66: 375-400.

9. Gaspers L.D., Thomas A.P. Calcium signaling in liver. Cell Calcium, 2005; 38(3-4): 329-342.
https://doi.org/10.1016/j.ceca.2005.06.009
PMid:16139354

10. Lowry J. H., Rosenbrough N. J., Farr A. L. et al. Protein measurements with the folic phenol reagent. J. Biol. Chem, 1951; 193(1): 265-275.

11. Miyakawa-Naito A., Uhlen P., Lal M. et al. Cell signaling microdomain with Na+,K+-ATPase and inositol 1,4,5-trisphosphate receptor generates calcium oscillations. J. Biol. Chem, 2003; 278(50): 50355-50361.
https://doi.org/10.1074/jbc.M305378200
PMid:12947118

12. Rodrigues M.A., Gomes D. A., Andrade V. A. et al. Insulin induces calcium signals in the nucleus of rat hepatocytes. Hepatology, 2008; 48(5): 1621-1631.
https://doi.org/10.1002/hep.22424
PMid:18798337 PMCid:PMC2825885

13. Saermark T., Flint N., Evans W.H. Hepatic endosome fractions contain an ATP-driven proton pump. Biochem. J, 1985; 225 (1): 51-58.
https://doi.org/10.1042/bj2250051
PMid:2983664 PMCid:PMC1144552

14. Strunecka A. Cytosolic free Ca2+ level in isolated hepatocytes: the effect of insulin. Gen. Physiol. Biophys, 1985; 4(5): 505-516.

15. van de Put F.H., Visser G.J., Donkers E.A. et al. Basal Mg2+-dependent ATPase activity of rat liver microsomes is not influenced by ambient free Ca2+. Eur. J. Biochem, 1993; 218 (3): 959-962.
https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1993.tb18453.x
PMid:8281948

16. Pierebon N., Renard-Rooney D.C., Gaspers L.D. et al. Ryanodine Receptors in liver. J. Biol. Chem, 2006; 281(45): 34086-34095.
https://doi.org/10.1074/jbc.M607788200
PMid:16973607


Refbacks

  • There are currently no refbacks.


Copyright (c) 2012 Studia biologica

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.